Продукционный процесс и регуляция фотосинтеза C3-растений в изменяемых условиях углеродного и азотного питания
Существенными признаками фенотипической адаптации являются морфологические изменения, выражающиеся в увеличении отношения Я/БЬ и биохимические, сводящиеся к увеличению отношения НСУ/белок, которые наблюдались у гороха, склонного к быстрому образованию дополнительных органов-акцепторов на ранней вегетативной стадии роста. Следствием исключения влияния морфогенеза при изучении сахарной свешш… Читать ещё >
Содержание
- Список сокращений
- ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- Глава 1. Ассимиляция углерода и азота при фотосинтезе
- 1. 1. Механизмы усвоения углекислоты при фотосинтезе
- 1. 1. 1. Автотрофная ассимиляция углерода на свету (фотоавтотрофия)
- 1. 1. 2. Фотодыхание и гликолатный путь фотосинтеза
- 1. 1. 3. Рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза — основной фермент авто-трофной ассимиляции С
- 1. 1. 4. Карбоангидраза
- 1. 1. 5. Конечные продукты фотосинтеза
- 1. 2. Регуляция ассимиляции углекислоты в’листьях
- 1. 3. Влияние повышенной концентрации СО2 на морфофизиологические и биохимические параметры растений
- 1. 3. 1. Предварительные наблюдения
- 1. 3. 2. Изменения морфологических параметров при повышении концентрации СО
- 1. 3. 3. Фотосинтез при повышенной концентрации С
- 1. 3. 4. Проблемы, связанные с механизмами фенотипической адаптации к повышенной концентрации СО
- 1. 3. 5. Параметры регуляции фотосинтеза
- 1. 3. 6. Ферменты при повышенной концентрации СО
- 1. 3. 6. 1. Карбоангидраза
- 1. 3. 6. 2. Рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза
- 1. 3. 6. 3. Сахарозофосфатсинтаза
- 1. 3. 7. Неструктурные углеводы при повышенной концентрации СО
- 1. 3. 8. Роль морфогенеза в проявлении признаков акклимации у растений при повышенной концентрации СО
- 1. 3. 9. Взаимодействие углерода и азота
- 1. 4. Ассимиляция азота при фотосинтезе
- 1. 4. 1. Азот в атмосфере и почве
- 1. 4. 2. Ассимиляция нитрата при фотосинтезе
- 1. 4. 3. Ассимиляция аммония
- 1. 5. Симбиотическая фиксации молекулярного азота и ее связь с фотосинтезом
- 1. 5. 1. Механизмы симбиотической фиксации азота
- 1. 5. 2. Связь азотфиксации с фотосинтезом
- 1. 5. 3. Симбиотическая азотфиксация и минеральное питание растений
- 1. 1. Механизмы усвоения углекислоты при фотосинтезе
- 2. 1. Объекты исследования
- 2. 2. Морфометрические параметры
- 2. 3. Методы биохимического анализа
- 2. 3. 1. Определение содержания белка
- 2. 3. 2. Определение содержания хлорофилла
- 2. 3. 3. Определение содержания углеводов
- 2. 4. Измерение скорости СОг-газообмена (нетто-фотосинтез)
- 2. 5. Определение карбоксилазной активности рибулозо-1,5-бис-фосфаткарбоксилазы / оксигеназы
- 2. 5. 1. Получение ферментного препарата
- 2. 5. 2. Определение карбоксилазной активности рибулозо-1,5-бисфос-фаткарбоксилазы / оксигеназы
- 2. 5. 3. Оценка «реальной» активности рибулозо-1,5-бисфосфаткарбок-силазы / оксигеназы
- 2. 6. Определение активности ферментов азотного метаболизма
- 2. 6. 1. Получение ферментного препарата
- 2. 6. 2. Активность глутаминсинтетазы
- 2. 6. 3. Активность Фд-спедифичной глутаматсинтазы
- 2. 6. 4. Активность НАДН-специфичной глутаматсинтазы
- 2. 7. Измерение параметров корневой деятельности
- 2. 7. 1. Измерение скорости дыхания корневой системы
- 2. 7. 2. Измерение скорости симбиотической азотфиксации
- 3. 1. Влияние повышенной концентрации С02 на рост и биохимический состав листьев гороха
- 3. 2. Влияние удвоенной концентрации С02 на морфо-физиологические параметры и биохимический состав листьев сахарной свеклы
- 3. 3. Обсуждение к главе 3
- 4. 1. Рост и структура биомассы
- 4. 2. Биохимический состав листьев
- 4. 2. 1. Неструктурные углеводы
- 4. 2. 2. Водорастворимый белок
- 4. 2. 3. Хлорофилл
- 4. 3. Фотосинтез и рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза
- 4. 3. 1. С02-газообмен (нетто-фотосинтез) в реальных условиях
- 4. 3. 2. Потенциальная скорость фотосинтеза
- 4. 3. 3. Световые кривые фотосинтеза
- 4. 3. 4. Карбоксилазная активность рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксила-зы / оксигеназы in vitro
- 4. 3. 4. 1. Активность рибулозо-1,5-бисфосфат-карбоксилазы в условиях, имитирующих условия роста
- 4. 3. 4. 2. Полностью активированная рибулозо-1,5-бисфосфаткарбокси-лаза
- 4. 4. 1. Глутаминсинтетаза
- 4. 4. 2. Фд-зависимая глутаматсинтаза
- 4. 4. 3. НАДН- зависимая глутаматсинтаза
- 4. 5. 1. Дыхание корневой системы
- 4. 5. 2. Симбиотическая азотфиксация
Продукционный процесс и регуляция фотосинтеза C3-растений в изменяемых условиях углеродного и азотного питания (реферат, курсовая, диплом, контрольная)
Углерод и азот — важнейшие элементы питания высших растений, составляющие соответственно 40 — 50% и 2 — 5% от сухой массы [Крето-вич, 1971].
Современная концепция автотрофной ассимиляции углерода в восстановительном пентозо-фосфатном цикле (ВПФЦ) фотосинтеза создана Кальвином и Бенсоном в конце 40-х — начале 50-х годов XX столетия [Bassham, Calvin. 1957] и позднее дополнена схемой гликолатного пути фото дыхания [Tolbert, 1971]. Широкие исследования зависимости фотосинтеза от ряда факторов окружающей среды, проведенные в экспериментальных условиях, показали, что процесс фотосинтеза подвержен многоуровневой регуляции такими факторами, как онтогенез, свет, температура, концентрация С02 ([С02]) [Эдварде, Уокер, 1986; Берри, Да-унтон, 1987].
Основная масса сведений о росте, фотосинтезе и метаболизме углерода и азота была получена при современной концентрации С02, которая обеспечивает фотосинтез не более, чем на 50% [Bowes, 1993]. Начиная с середины прошлого века, концентрация диоксида углерода в атмосфере повышается с заметной скоростью, и по имеющимся прогнозам, в первой четверти следующего столетия [С02] в атмосфере может удвоиться по сравнению с нынешней [Джиффорд, 1987]. Этот непреложный факт поставил перед физиологией растений новые задачи выявления последствий прогнозируемых [С02] для общей продуктивности растительного покрова Земли, качества продукции и видового состава земной флоры. Имеющиеся данные о влиянии повышенной [С02] на механизм адаптации к повышению [С02] не всегда согласуются между собой, а множественность действующих факторов, помимо [С02], затрудняет интерпретацию результатов. Поэтому постановка новых целенаправленных исследований, дающих возможность исключать влияние одних факторов, чтобы оценить эффективность действия других, является чрезвычайно актуальной.
Фотосинтез — главная, хотя и не единственная, составляющая продуктивности автотрофов. Теория продуктивности растений, на протяжении многих лет разрабатывавшаяся A.A. Ничипоровичем, содержит фундаментальное понятие о необходимости гармоничного сочетания элементов минерального питания, прежде всего, углеродного и азотного [Ничипорович, 1956].
Азот поступает в растение в процессе корневого питания. Его источниками, как правило, являются минеральные соединения (ионы нитрата или аммония). Концепция о механизмах и локализации процессов ассимиляции азота создавалась и развивалась параллельно с обоснованием концепции фотосинтеза [Кретович, 1987; Miflin, Lea, 1976; Wallsgrove Lea, 1985].
Метаболические реакции ассимиляции азота у автотрофов тесно связаны с процессом фотосинтеза, который, с одной стороны, является прямым или косвенным источником энергии, и с другой стороны, продуцирует углеродные цепочки, необходимые для построения азотсодержащих метаболитов. Исследования взаимозависимости фотосинтеза и метаболизма азота [Андреева, 1969; Измайлов, 1986; Guerrero et al., 1981] получили развитие во второй половине XX века, по мере накопления информации о частных механизмах и способах их регуляции.
В ряде случаев источником азота для высших растений могут служить продукты, образуемые некоторыми симбиотическими микроорганизмами в процессе ассимиляции молекулярного азота воздуха. Изучению возможностей использования симбиотической Ыг-фиксации как рациональному и экономичному способу азотного питания растений было уделено особое внимание ввиду его дешевизны и экологической чистоты. Активные поиски повышения продуктивности и экономической эффективности растений при симбиотической-фиксации путем снижения доз связанного минерального азота показали, что в некоторых уеловиях симбиотические отношения могут превращаться в паразитизм микроорганизма в отношении растения-хозяина [Кретович, 1987]. Вопрос о последствиях для углеродного метаболизма растения-хозяина перехода исключительно на азотфиксацию, чрезвычайно мало исследован.
Сложность метаболических связей в растении требует проведения комплексных исследований, в идеале системных, с привлечением опыта исследователей разных направлений и даже специальностей. В конечном счете, при высоком уровне знаний механизмов индивидуальных реакций ассимиляции углерода и азота «системный подход — единственный подход, который позволяет получить единственно правильные результаты и сделать соответствующие выводы» [Селье, 1972].
Настоящая работа представляет собой посильный вклад в разработку схем системного подхода к решению ряда конкретных задач, связанных с углеродным и азотным питанием высших растений.
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Глава 1.
АССИМИЛЯЦИЯ УГЛЕРОДА И АЗОТА ПРИ ФОТОСИНТЕЗЕ.
ВЫВОДЫ.
1. Сходство реакции растений гороха и сахарной свеклы на длительное воздействие повышенной [С02] при стандартной дозе нитрата заключалось в увеличении веса сухой массы и удельной скорости нетто-фотосинтеза, измеряемого в условиях роста.
2. У однолетнего растения гороха обнаружены признаки фенотипической адаптации к повышенной [С02], состоящие в увеличении отношения корень/надземная часть и накоплении неструктурных углеводов в листьях. У сахарной свеклы, характеризующейся растянутой вегетативной фазой роста, подобные признаки отсутствовали как при стандартной дозе азота, так и при его дефиците. Следовательно, проявление признаков фенотипической адаптации к повышенной [С02] обусловлено спецификой онтогенеза, но не дефицитом азота.
3. Конкурентные отношения между углеродным и азотным метаболизмом при фотосинтезе могут проявляться на уровне ростовой функции.
4. Симбиотическая азотфиксация в отсутствие связанного азота не способна обеспечить полноценное развитие клевера при атмосферной [С02] в условиях водного культивирования. Это выражалось в задержке роста растения, уменьшении удельного значения Рп, снижении плато световой кривой фотосинтеза и активности ключевых ферментов ассимиляции углерода и азота при высоких скоростях азотфиксации.
5. Ухудшение энергетического обеспечения фотосинтеза путем снижения интенсивности света привело к прекращению роста растения, таким образом, деятельность фотосинтетического аппарата в отсутствие нитрата была направлена преимущественно на поддержание жизнедеятельности симбиотических микроорганизмов и высокой скорости азотфиксации.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
.
Анализ результатов влияния повышенных [С02] на рост гороха и сахарной свеклы показал, что несмотря на большую разницу использованных [С02] приросты массы листьев у обоих растений были сравнимы. Фотосинтез, увеличение удельной скорости которого также было сравнимо в обоих случаях, был близок к теоретически возможному для РБФК/О.
Первым признаком адаптации к повышенной [С02] следует считать потерю обоими растениями способности ассимилировать С02 с соответствующей скоростью при измерениях в обычном воздухе. Это явление связано с вероятным повреждением механизма концентрирования С02, а не с активностью карбоксилирующего фермента.
Существенными признаками фенотипической адаптации являются морфологические изменения, выражающиеся в увеличении отношения Я/БЬ и биохимические, сводящиеся к увеличению отношения НСУ/белок, которые наблюдались у гороха, склонного к быстрому образованию дополнительных органов-акцепторов на ранней вегетативной стадии роста. Следствием исключения влияния морфогенеза при изучении сахарной свешш, растения с растянутой фазой вегетативного роста, явилось отсутствие признаков, присущих акклимации. Ограничение питания нитратом вызывало существенные физиолого-биохимические перестройки в растении сахарной свеклы, но не способствовало появлению комплекса признаков, наблюдавшихся у гороха. Т.о., ни повышение [С02], ни дефицит нитрата сами по себе не являются причинами указанных морфологических и биохимических изменений.
Взаимный эффект замедления прироста надземных органов под влиянием увеличивающихся концентраций С02 и нитрата, обнаруженный у сахарной свеклы, обусловлен тесной связью путей их ассимиляции и зависимостью от фотосинтеза. Можно полагать, что конкуренция первичных процессов восстановления и ассимиляции С02 и Ы03″ находит отражение и в.
107 дальнейшем сложном ходе процессов, приводящих в конечном счете к изменениям ростовой функции.
Вопрос о возможности роста с высокой продуктивностью в отсутствие «связанного» азота даже при наличии его «стартовой дозы» для клевера в условиях наших опытов решается отрицательно. При водном культивировании растений в отсутствие нитрата повреждались такие фундаментальные процессы как рост, фотосинтез и азотный обмен при многократном возрастании скорости азотфиксации. По существу азотфиксирующий микроорганизм в отсутствие нитрата конкурирует с самим растением за продукты фотосинтеза, являясь активным их потребителем, результатом чего является нарушение фотосинтеза и замедление роста растения — хозяина. Экспериментальное снижение скорости фотосинтеза путем уменьшения интенсивности света обостряло трофические взаимоотношения растения и микроорганизма, что привело к проявлению отчетливых признаков паразитизма, главным из которых является практически полная остановка роста растений, не получавших нитрат.
Список литературы
- Алехина Н.Д., Кренделева Т. Е., Полесская О. Г. Взаимосвязь процесса усвоения азота и фотосинтеза в клетке листа Сз-растений // Физиология растений. 1996. Т.43. N 1. С. 136−148.
- Андреева Т.Ф. Значение фотосинтеза для восстановления нитратов и синтеза белка в листе // Доклады АН СССР. 1951. Т.78. N 5. С.1033−1036.
- Андреева Т.Ф. Фотосинтез и азотный обмен листьев. М: Наука. 1969. 162с.
- Андреева Т.Ф., Авдеева Т. А. Белок фракции 1 и фотосинтетическая активность листьев // Физиология растений. 1970. Т. 17. Вып. 2. С. 225.
- Андреева Т.Ф., Авдеева Т. А., Власова М. П., Нгуен-тхыу-Тхыок, Ни-чипорович A.A. Влияние азотного питания растений на структуру и функцию фотосинтетического аппарата // Физиология растений. 1971. Т. 18. Вып. 4. С.701−707.
- Андреева Т.Ф., Маевская С. Н., Воевудская С. Ю. Взаимосвязь фотосинтеза и азотного обмена в различных условиях фосфорного и азотного питания растений горчицы // Физиология растений. 1992. Т.39. Вып. 4. С.680−686.
- Андреева Т.Ф., Маевская С. Н., Воевудская С. Ю. Взаимосвязь фотосинтеза с ассимиляцией азота у растений горчицы при воздействии возрастающих доз нитрата в питательном растворе // Физиология растений. 1998. Т.45. N 6. С.813−816.
- Барри Д.А., Даунтон У.Д. С. Зависимость фотосинтеза от факторов окружающей среды // В кн.: Фотосинтез. Под ред. Говинджи. Т.2. М.: Мир. 1987. С.273−364.
- Ю.Вавилов П. П., Посыпанов Г. С., Антогонизм и синергизм минерального и симбиотического азота // В кн.: Бобовые культуры и проблема растительного белка. М.: Россельхозиздат. 1983. С.73−81.
- Вильяме М.В., Ягодин Б. А., Сазонов Ю. Г. Симбиотическая фиксация азота у растений люпина в зависимости от условий фотосинтеза и азотного питания // Физиология растений. 1985. Т.32. N 1. С. 97−103.
- Гуляев Б.И. Влияние концентрации СОг на фотосинтез, рост и продуктивность растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1986. Т. 18. N 6. С.574−591.
- Демидов Э.Д., Павлова Е. А., Романова А. К. Участие фотосинтеза и дыхания в ассимиляции минерального азота клетками хлореллы в норме и при азотном голодании // Физиология растений. 1992. Т.39. Вып. 4. С.796−806.
- Н.Демидов Э. Д., Павлова Е. А., Смолов А. П. Светозависимое восстановление нитрата клетками хлореллы // Физиология растений. 1986. Т.ЗЗ. Вып. 5. С.913−931.
- Джиффорд P.M. Глобальный фотосинтез и проблема пищевых и энергетических ресурсов // В кн.: Фотосинтез. Т.2. Под ред. Говинджи. М.: Мир. 1987. С.411−453.
- Евстигнеева З.Г. Глутаматсинтазный цикл у растений // Прикладная биохимия и микробиология. 1993. Т.29. Вып. 1. С.5−17.
- П.Евстигнеева З. Г., Радюкина H.A., Пушкин A.B. Переведенцев О. В., Шапошников Г. Л., Кретович В. Л. Очистка и физико-химические свойства глутаминсинтазы хлоропластов листьев гороха // Биохимия. 1979. Т. 44. Вып. 7. С. 1303−1309.
- Измайлов С.Ф. Азотный обмен в растениях. М.: Наука. 1986.' 320с.
- Карпушкин Л.Т. Газометрический метод изучения СОг-газообмена высших растений: Автореф. дисс.. канд. биол. наук. М.: Институт физиологии растений им. К. А. Тимирязева АН СССР. 1972. 21с.
- Кондратьева E.H., Гоготов И. Н. Молекулярный водород в метаболизме микроорганизмов. М.: Наука. 1981. 342с.
- Кретович В.Л. Основы биохимии растений. М.: Наука. 1971. 474с.
- Кретович В.JI. Усвоение и метаболизм азота у растений. М.: Наука. 1987. 486с.
- Кретович В.Л., Асеева К. Б., Евстигнеева З. Г., Шапошников Г. А., Ра-дюкина H.A., Романов В. И., Мартынова Е. М. Изменение интенсивности симбиотической фиксации азота в процессе вегетации // Физиология растений. 1973. Т. 20. Вып. 6. С. 1209−1211.
- Кузнецова Л.Г., Новичкова Н. С., Шевелева Е. В., Ракитина Т. Я., Кефе-ли В.И. Азотный стресс, рост и содержание цитокининов в листьях клевера // Тезисы докладов Второго Всесоюзного общества физиологов растений. Минск. 1990. С. 49.
- Лонг С.П., Холлгрен Дж.Е. Измерение ассимиляции С02 растениями в п олевых условиях //.Фотосинтез и продуктивность: методы определения. М. Агропромиздат. 1989. С. 165−171.
- Мокроносов А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Наука. 1981. 196с.
- Нгуен Тхи Чи, Андреева Т. Ф., Строгорова Л. У., Маевская С. Р., Жиз-невская Г. Я., Ничипоровия A.A. Изаимосвязь фотосинтеза с азотфик-сацией у растений люпина // Физиология растений 1983. Т.30. Вып. 5. С.925−930.
- Ничипорович A.A. Фотосинтез и теория получения высоких урожаев. 15-е Тимирязевское чтение // М.: Изд-во АН СССР. 1956. 94с.
- Пухальская Н.В., Ромин Н., Аканов Э. Н. Рост и С02-газообмен при проростании пшеницы в атмосфере, обогащенной С02 // Физиология растений. 1997. Т.44. N 2. С. 172−176.
- Романов В.Р., Четкова С. А., Тихонович И. А., Черменская И. Е., Крето-вич В.Л. Азотфиксация и динамика поступления 14С, ассимилированного листьями в клубеньки хлорофильных мутантов гороха // Физиология растений. 1987. Т.34. Вып. 3. С. 486−492.
- Романова А.К. Биохимические методы изучения автотрофии у микроорганизмов//М.: Наука. 1980. 159с.
- Романова А.К. Рибулозобисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы // В кн.: Успехи биологической химии. 1991. Т.32. С.87−113.
- Романова A.K. Механизмы биосинтеза и генная инженерия рибулозо-бисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы // В кн.: Успехи биологической химии. 1997. Т.37. С.211−260.
- Селье Г. На уровне целого организма. М.: Наука. 1972. 122с.
- Семененко В.Е. Молекулярно-биологические аспекты эндогеннной регуляции фотосинтеза // Физиология растений. 1978. Т.25. Вып. 5. С.903−923.
- Семененко В.Е., Абрамова С., Георгиев Д., Пронина H.A. Сравнительное изучение активности и локализации карбоангидразы в клетках Chlorella и Scenedesmus// Физиология растений. 1977. Т. 24. Вып. 5. С. 1055−1059.
- Умаров М.М. Ацетиленовый метод изучения азотфиксации в почвен-но-микробиологических исследованиях // Почвоведение. 1976. N 11. С. 119-,
- Федорова Е.Э., Потатуева Ю. А. Ультраструктура и азотфиксирующая активность клубеньков красного клевера при внесении молибдена // Физиология растений. 1984. Т.31. Вып. 6. С.1120−1126.
- Цюрюпа С.Н., Новичкова Н. С., Романова А. К. Кинетические характеристики рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилазы in vivo. II. Зависимость от режима выращивания фотосинтезирующих листьев тритикале // Физиология растений. 1993. Т. 40. N 4. С. 546−552.
- Четкова С.А., Четверикова А. Г., Романов В. И., Тихонович И. А. Характеристика фотосинтетического аппарата хлорофильных мутантов гороха как модели для изучения взаимосвязи между фотосинтезом и симбиотической азотфиксацией// С.-х. биол. 1987. N 9. С.50−54.
- Чмора С.Н., Мокроносов А. Т. Глобальное повышение С02 в атмосфере и адаптивная стратегия растений // Физиология растений. 1994. Т.41. N 5. С.768−778.
- Шапошников Г. Л., Евстигнеева З. Г., Асеева К. Б., Кретович B.JI. Изменение интенсивности фиксации молекулярного азота, содержания свободных аминокислот и аммиака в клубеньках люпина в течение суток//Физиология растений. 1975. Т. 22. Вып. 4. С.786−793.
- Эдварде Дж., Уокер Д. Фотосинтез С3 и С4 растений: механизмы и рефляция // М.: Мир. 1986. 598с.
- Abu-Shakra S.S., Phillips D.A., Huffaker R.C. Nitrogen Fixation and Delayed Leaf Senescence in Soybeans // Science. 1978. V. 199. P. 973−975.
- Anderson J.M. Photoregulation of the composition, function and structure of thylakoid membranes//Ann. Rev. Plant Physiol. 1986. V.37. Р.93−136Г"
- Andrews T.J., Lorimer G.H. Rubisco: structure, mechanisms and prospects of improvement. // In: The Biochemistry of Plants. Eds. Hatch M.D. and Boardman N.R. N.-Y. Academic Press. 1987. Y. 10. Photosynthesis. P. 131 218.
- Amon D.I. Copper Enzymes in Isolated Chloroplasts. Polyphenoloxydase in Beta vulgaris II Plant Physiol. 1949. V.24. P.1−15.
- Arp W.J., Drake B.G. Increased photo synthetic capacity of Sciipus olneyi after 4 years of exposure to elevated C02 // Plant Cell Environ. 1991. V. 14. P. 1003−1006.
- Badger M.R., Price G.D. The role of carbonic anhydrase in photosynthesis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V. 45. P.369−392.
- Baker J.Т., Allen L.H.Jr., Boote K.J. Growth and yield responses of rice to carbon dioxide concentration // J.Agric. Sci. Camb. 1990. V. 115. P.313−320.
- Barneix A.J., Breteler H., van de Geijn S.C. Gas and Ion Exchanges in Wheate Roots after Nitrogen Supply // Physiol. Plantar. 1984. V.61. P.357−362.
- Bassham, Calvin. The path of carbon in photosynthesis. Englewood Cliffs. N.J.Prentice-Hall. Inc. 1957. 207 p.
- Becana M., Sprent Y.I., Nitrogen fixation and nitrat reduction in the root nodules of legumes //Physiol. Plantar. 1987. V.70. P.757−765.
- BenZioni A., Vaadia Y., Lips S.H. Nitrate uptake by roots reduction products of the shoot// Physiol. Plantar. 1971. V.24. P.288−290.
- Besford R.T., Ludwig L.J., Withers A.C. The greenhouse effect: acclimation of tomate plants growing in high C02, photosynthesis and ribulose-bisphosphate carboxylase protein//J. Exp. Bot. 1990. V.40. P.925−931.
- Bethlenfalvay G.J., Abu-Shakra S.S., Phillips D.A. Interdependence of nitrogen and photosynthesis in Pisum sativum // Plant Physiol. 1978. V. 62. P. 127−133.
- Bethlenfalvay G.J., Phillips D.A. Effect of light intensity on efficiency of carbon dioxide and nitrogen reduction in Pisum sativum // Plant Physiol. 1977. V. 60. P. 868−871.
- Bowes G. Growth at elevated C02: photosynthetic response mediated through Rubisco // Plant Cell Environ. 1991. V.14. P. 795−806.
- Bowes G. Facing the Inevitable: Plants and Increasing Atmospheric C02 // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P.309−332
- Bunce J. A. Effect of doubled atmospheric carbon dioxide concentration on the responses of assimilation // Plant Cell Environ. 1993. V.16. P. 189−197.
- Bumell J.H., Gibbs M.J. Mason J.J. Spinach chloroplastic carbonic anhy-drase. Nucleotide sequence of cDNA. // Plant Physiol. 1990. V.92. P.37−40.
- Campbell W.J., Allen L.H., Jr., Bowes G. Effect of C02 Concentration on Rubisco Activity, Amount and Photosynthesis in Soybean Leaves // Plant Physiol. 1988. V.88. P.1310−1316.
- Campbell W.J., Allen L.H., Jr., Bowes G. Response of soybean canopy photosynthesis to CO2 concentration, light and temperature // J. Exp. Bot. 1990. V.41. P.427−433.
- Cave G., Tolley L.C., Strain B.R. Effect of carbon dioxide enrichment on chlorophyll content, starch content and starch grain structure in Trifolium subterraneum leaves // Plant Physiol. 1981. V.51. P. 171−174.
- Cervigni T., Teofani F., Bassanelli C. Effect of CO2 on carbonic anhydrase in Avena sativa and Zea mays // Phytochemistiy. 1971. V. 10. P.2991−2994.
- Chang C.W. Carbon Dioxide and Senescence in Cotton Plant // Plant Physiol. 1975. V.55. P.515−519.
- Ching T.M., Hedtke S., Russell S.A., Evans H.J. Energy State and Nitrogen Fixation in Soybean Nodules of Dark- grown Plants // Plant Physiol. 1975. V.55. P.796−798.
- Chu A.C.P., Robertson A.G. The effect of shading and defoliation on nodulation and nitrogen fixation by white clover // Plant and Soil. 1974. V. 41. P. 509−519.
- Conroy J.P. Influence of elevated atmospheric C02 concentrations on plant nutrition//Austr. J. Bot. 1992. V.40. P.445−456.
- Conroy J.P., Milham P.J., Barlow E.W.R. Effect of nitrogen and phosphorus availability on the growth response of Eucalyptus grundis to high C02 // Plant Cell Environ. 1992. V.15. P.843−847.
- Conroy J.P., Smillie R.M., Kuppers M., Beverge E.W. Chlorophyll a fluorescence and photosynthetic and growth responses of Pinus radiata to phosphorus deficiency, drought stress and high CO2// Plant Physiol. 1986. V.81. P.423−429.
- Coronado C., Zuanazzi J.A.S., Sallaud C., Quirion J-C., Esnault R., Husson H.-P., Kondorosi A., Patet P. Alfalfa Root Flavonoid Production is Nitrogen Regulated // Plant Physiol. 1995. V. 108. P.533−542.
- Cullimore J.V., Gerhardt C., Saarelainen R., Miflin B.J., Idler K.B., Barker R.F. Glutamine synthetase of Phaseolus vulgaris L.: organ-specific expression of a multigene family // J.Mol. Genet. 1984. V.2. P.589−599.
- Cure T.D., Acock B. Crop response to carbon dioxide doubling: a literature survey//Agric. For. Meteorol. 1986. V.38. P. 127−145.
- Deroche M.E., Carragol E., Jolivet E. Phosphoenolpyruvate carboxylase in legume nodules // Physiol. Veg. 1983. V. 21. P. 1075−1081.
- Drake B.G., Gonzales-Meler M.A., Long S.P. More Efficient Plants: A Consequence of Rising Atmospheric C02? // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1997. V.48. P.609−639.
- DuBois M., Gilles K.A., Hamilton J.K., Roberts R.A., Smith E. Colorimet-ric Method for Deteimination of Sugars and Related Substances // Anal.™ Chem. 1956. V.28. P.350−356.
- Fader G.M., Koller H.R. Relationship between carbon assimilation, partitioning and export in leaves of two soybean cultivars // Plant Physiol. 1983. V.73. P.297−303.
- Farage P.K., McKee I.F., Long S.P. Does a Low Nitrogen Supply Necessarily Leads to Acclimation of Photosynthesis to Elevated C02? // Plant Physiol. 1998. V. 118. P.573−580.
- Fett J.P., Coleman J.R. Characterization and expression of two cDNA’s encoding carbon anhydrase in Arabidopsis thaliana II Plant Physiol. 1994. V.105. P.707−713.
- Frydrych J. Photo synthetic characteristics of cucumber seedlings grown under two levels of carbon dioxide // Photosynthetica. 1976. V.10. P.335−338.
- Gifford R.M. Growth Pattern, Carbon Dioxide Exchange and Diy Weight Distribution in Wheat Growing under Differing Photo synthetic Environments // Aust. J. Plant Physiol. 1977. V.4. P. 99−110.
- Graumlich L.J., Brubaker L.B., Grier Ch. Long-term trends in forest net primary productivity: Cascade mountains Washington // Ecology. 1989. V.70. P.405−410.
- Guerrero M.G., Vega J.M., Losada M. The assimilatory nitrate-reducing system and its regulation // Annu. Rev. Plant Physiol. 1981. V.32. P. 169 204.
- Hardy R.W.E., Havelka U.D. Nitrogen Fixation on Research: a Key to World Food // Science. 1975. V.188. P. 633−645.
- Harper J.E. Soil and symbiotic nitrogen requirement of optimum soybean production//Crop. Sci. 1974. N 14. P. 255−260.
- Haitman F.C., Haipel M.R. Chemical and genetic probes of the active site of D-ribulose-l, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase: a retrospective based on the three-dementional structure // Adv. in Enzymol. 1993. V.67. P. 1−57.
- Hartman F.C., Haipel M.R. Structure, function, regulation and assemble of D-ribulose-l, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase // Annu. Rev. Bio-chem., 1994. V.63. P. 197−234.
- Hatch M.D., Burnell J.N. Carbonic anhydrase activity in leaves and its role in the first step of photosynthesis // Plant Physiol. 1990. V.93. P.825−828
- Hicklenton P.R., Jolliffe P.A. Alterations in the physiology of C02 exchange in tomato plants growth in C02-enriched atmospheres // Can. -Jr Botany. 1980. V.58. P.2181−2189
- Hopfner M., Reifferscheid G., Wild A. Molecular composition of gluta-mine synthetase of Sinapis alba L. // Z.Naturforsch. 1988. N 43. P. 194−198.
- Huber S.C., Huber J.L. Role and regulation of sucrosephosphat synthase in higher plants. // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996. V.47. P.431−444.
- Jackson W.A., Kwik K.D., Volk R.G. Nitrate uptake during recovery from nitrogen deficiency // Physiol.Plant. 1976. V.36. P. 174−181.
- Jang J.C., Sheen J. Sugar sensing in higher plants // Plant Cell. 1994. V.6. P. 1665−1679.
- Jones P., Allen L., Jones J.W., Valle R. Photosynthesis and transpiration responses of soybean canopies to short- and long-term CO2 treatments // Agron. J. 1985. V.77. P. 119−126.
- Kachru R.B., Anderson L. Chloroplast and cytoplasmic enzymes. V. Pea-leaf carbonic anhydrase // Planta. 1974. V.118. P.235−240.
- Kefeli V.I., Kuznetsova L.G., Novichkova N.S., Rakitina T.A. The effect of various levels of nitrogen on cytokinin in clover leaves and plant growth // In: Sowiet-Indian Symposium of regulation of photosynthesis (Abstracts). Pushino. 1990. P. 45−46.
- Kendall A.C., Turner J.C., Thomas S.M. Effects of C02 enrichment at different irradiance on growth and yield of wheat // J. Exp. Botany. 1985. V.36. P.252−273.
- Kennedy I.R., Rigaud J., Trinchant J.C. Nitrate reductasefrom bacteroid-sof Rhizobium japonicum: enzyme characteristics and possible interaction with nitrogen fixation // Biochim. Biophys. Acta. 1975. V.397. P. 24−35.
- Khayal E., Zieslin N. Translocation of 14C, carbogydrate content and activity of the enzymes of sucrose metabolism in rose petals at different night temperature//Physiol. Plantar. 1989. V.76. P.581−585.
- Kimball B.A. Carbon dioxide and agricultural yield: an assamblage and analysis of 430 prior observations // Agron. J. 1983. V.75. P.779−788.
- Klein R.R., Crafts-Brandner S.J., Salvucci M.E. Cloning and developmental expression of the sucrose-phosphate-synthase gene from spinach // Planta. 1993. V.190. P.498−510
- Koch K.E. Carbohydrate-modulated gene expression in plant // Ami. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996. V.46. P.509−540.
- Koch K.E. Molecular crosstalk and the regulation of C- and N-response genes // In: A Molecular Approach to Primary Metabolism of Higher Plants. Foyer C.H., Quick W.P. (eds.). Taylor & Francis. London. 1997. P. 105-' 124.
- Krapp A., Hoffman B., Schafer C., Stitt M. Regulation of the expression of rbS and other photosynthetic genes by carbohydrate: a mechanism for the «sink- regulation of photosynthesis // Plant J. 1993. V.3. P.817−828.
- Lara M., Porta H., Padilla J. Folch J., Sanchez F. Heterogenity of gluta-mine synthetase polypeptides in Phaseolus vulgaris L. // Plant Physiol. 1984. V.76. P. 1019−1023.
- Larigauderie A., Roy J., Berger A. Long term of high CO2 concentration on photosynthesis of water hiacinth (Eichomia crassipea (Mart.) Solms) // J. Exp. Bot. 1986. V.37. P. 1303−1312.
- Lown R.J., Brun W.A. Symbiotic N2-fixation in soybeans. Effect of pho-tosynthetic source-siks manipulations//Crop. Sci. 1974. V.14. P. 11−16.
- Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein Measurement with the Folin Reagent // J. Biol. Chem. 1951. V. 193. P.265−275.
- Mack G., Tischner R. Glutamine synthetase oligomers and isoforms in sugar beet (Beta vulgaris L.) // Planta. 1990. V.181. P. 10−17.
- Majeau N., Amoldo M.A., Coleman J.R. Modification of carbonic anhy-drase activity by antisence and overexpression constructs in transgenic tobacco // Plant Mol. Biol. 1994. V.25. P.377−385.
- Majeau N., Coleman J.R. Isolation and characterization of a cDNA coding for pea chloroplastic carbonic anhydrase // Plant Physiol. 1991. V.95. P.264−268.
- Majeau N., Coleman J.R. Effect of C02 Concentration on Carbonic Anhydrase and Ribulose-l, 5-bisphosphate Carboxylase/Oxygenase Expression in Pea // Plant Physiol. 1996. V.112. P.569−574.
- Mann A.F., Fentem P.A., Steward G.R. Tissue localization of bailey (Hordeum vulgare) glutamine synthetase isoenzymes // FEBS Lett. 1980. V.110. P.265−267.
- McFadden B.A., Small L. Cloning, expression and directed mutegenesis of the genes for ribulose bisphosphate carboxylase/oxygenase // Minireview. Photosynth. Res. 1988. V. 18. P. 245−260.
- McNally S., Hirel B. Glutamine synthetase isoforms in higher plants // Physiol, veg. 1983. V.21. P.761−774.
- Meldyn B.E. The optimal allocation of nitrogen within the C3 photosyn-thetic system at elevated C02 // Austral. J. Plant Physiol. 1996. V.23. P.593−603
- Miflin B.J., Lea P.J. The Pathway of Nitrogen Assimilation in Plants // Phytochem. 1976. V.15. P.873−885.
- Milford G.F.J., Pearman J. The relationship between photosynthesis and concentration of carbohydrates in the leaves of sugar beet // Photosyn-thetica. 1975. V.9. P. 78−83.
- Miller A., Tsai Ch.-H., Hemphill D., Enares M., Rodermel S., Spalding M. Elevated C02 Effects during Leaf Onthogeny // Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 1195−1200
- Miller R.E., Stadtman E.R. Glutamate synthase from Escherichia coli. An irohnsuleide elavoprotein // J. Biol. Chem. 1972. V.247. N 22. P.7407−7419.
- Minchin F.R., Pate J.S. The carbon balance of a legume and the functional of its root nodules // J. Exp. Bot. 1973. V.24. P. 259−363.
- Moore B.D., Cheng S. H., Rice J., Seemann J.R. Sucrose cycling, Rubisco expression, and prediction of photo synthetic assimilation to elevated atmospheric C02 // Plant Cell Environ. 1998. V.21. P.905−915.
- Nafziger E.D., Koller H.R. Influence of leaf starch concentration on C02 assimilation in soybean // Plant Physiol. 1976. V.57. P.560−563.
- Nahon T., Ida S., Takahashi E. Isolation and characterisation of NADH-glutamate synthase from pea (Pisum sativum L) // Plant Cell Physiol., 1980. V.21. P.1461−1474.
- Nie G.Y., Long S.P., Webber A.N. The effect of nitrogen supply on down-regulation of photosynthesis in spring wheat grown in an elevated C02 concentration (abstract N 785) // Plant Physiol. 1993. V. 102. S-138.
- Pate J.S., Herridge D.F. Partitioning and utilization of net photosynthate in a nodulated annual legume // J. Exp. Bot. 1978. V.29. P. 401−412.
- Patterson D.T., Flint E.P. Potential effects of global atmospheric C02 enrichment on the growth and competitiveness C3 and C4 weed crop plants // Weed Sci. 1980. V.28. P.71−75.
- Paul M.J., Driscoll S.P. Sugar repression of photosynthesis: role of carbohydrates in signalling nitrogen deficiency through source sink imbalance // Plant Cell Environ. 1997. V.20. P. 110−116.
- Peaz A., Hellmers H., Strain B.R. C02 effect on apical dominance in Pisum sativum // Physiol. Plantarum. 1980. V.50. P.43−46.
- Peet M.M. Acclimation to high C02 in Monoecious Cucumbers. I. Vegetative and reproductive growth // Plant Physiol. 1986. V.80. P.59−62.
- Peet M.M., Huber S.C., Patterson D.T. Acclimation to High C02 in Monoecious Cucumbers. II. Carbon Exchange Rates, Enzyme Activities, and Starch and Nutrient Concentrations // Plant Physiol. 1986. V.80. P.63−67.
- Peet M.M., Willits D.H. Source-sink factors affecting response of greenhouse tomatoes to C02 enrichment // Acta Holticulture. 1984. V. 162. P.121−128.
- Phillips D.A., Newell K.D., Hassell S.A., Felling C.E. The effect of C02 enrichment on root nodule development and symbiotic N2 reduction in Pisum sativum L. // Amer. J. Bot. 1976. V.63. P.356−362.
- Porter M.A., Grodsinski B. Acclimation to Hight C02 in Bean. Carbonic Anhydrase and Ribulose Bisphosphate Carboxylase // Plant Physiol. 1984. V.74. P.413−416.
- Portis A.R. Regulation of ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase activity // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V.43. P.415−437.
- Radin J.W., Kimball B.A., Hendrix D.L., Mauney J.R. Photosynthesis of cotton plants exposed to elevated levels of carbon dioxide in the field // Photosynth. Res. 1987. V. 12. P. 191−203.
- Reed M.I., Graham D. Carbonic anhydrases in plants: distribution, properties and possible physiological roles // Progress in Phytochemictry.
- J.B.Harbome, Swain T. (eds.) V. 7. Pergamon Press. Oxford. UK. 1981. P.47−94.
- Rigaud J., Bergersen F.J., Turner G.I., Daniel R.M. Nitrate dependent anaerobic acetylene-reduction and nitrogen-fixation by soybean bacteroids // J. Gen. Microbiol. 1973. V. 77. P. 137−144.
- Rigaud J., Puppo A. Effect nitrite upon leghemoglobin and interaction with nitrogen-fixation // Biochem. Biophys. Acta. 1977. V. 497. P. 702 706.
- Robinson S.P. Osmotic adjustment by intact isolated chloroplasts ir. response to osmotic stress and its effect on photosynthesis and chloroplast volume // Plant Physiol. 1985. V.79. P.996.
- Roeske C.A., Ogren W.I. Nucleotide sequence of pea cDNA encoding chloroplast carbonic anhydrase // Nucleic Acids Res. 1990. V. 18. P.3413−3418.
- Rogers G.S., Milham P.J., Gillings M., Conroy J.P. Sink strengh may be the key to growth and nitiogen responses in N-deficient wheat at elevated C02 // Aust. Plant Physiol. 1996. V.23. P.253−264.
- Rogers H.H., Cure J.D., Thomas J.F., Smith J.M. Influence of elevated C02 on growth of soybean plants // Crop Sci. 1984. V.24. P.361−366.
- Rogers H.H., Thomas J.F., Bingham G.E. Responce of Agronomic and Forest Species to Elevated Atmospheric Carbon Dioxide // Science. 1980. V.220. P.428−429.
- Rowland-Bamford A.J., Baker J.T., Allen L.H., Bowes G. Acclimation of rice to changing atmospheric carbon dioxide oncentration // Plant Cell Environ. 1991. V. 14. P.577−583.
- Rufty T.W., Jr., MacKown Ch.T., Volk R.J. Alterations in nitiogen assimilation and partitioning in nitiogen stressed plants // Physiol. Plantar. 1990. V.79. P.85−95.
- Sage R.F., Sharkey T.D., Seeman J.R. Acclimation of Photosynthesis to Elevated Carbon Dioxide in Five C3 Species // Plant Physiol. 1989. V.89. P.590−596.
- Salvucci M.E. Regulation of rubisco in vivo // Physiol. Plantar. 1989. V.77. P. 164−171.
- Shapiro R.S., Stadtman E.R. Glutaminsynthetase of Escherichia coli // Methods in enzymology N.-Y., San Francisco, L.: Academic Press. .1976':™ V. 17. Part A. P.910−912.
- Sheen J. Feedback-control of gene expression // Photosynth. Res. 1994. V.39. P.427−438.
- Silbery Y.H., Hancock T.W., Growth Responces of Cultivars of Subterranean Clover to Temperature, Plant Density and Nitrate Supply // Aust. J. Agric. Res. 1990. V.41. P. 101−114.
- Sionit N., Hellmers H., Strain B.R. Growth and yield of wheat under C02 enrichment and water stress // Crop Sci. 1980. V.20. P.687−690.
- Small J.J.C., Leonardo O.A. Translocation of 14C labeled photosynthate in nodulated legumes as influenced by nitrate nitrogen // Amer. J. Bot. 1969. V.56. P.187−194.
- Socias F.X., Medrano H., Sharkey T.D. Feedback limitation of photosynthesis of Phaseolus vulgaris L. grown at elevated carbon dioxide // Plant Cell Environ. 1993. V.16. P.81−86.
- Spencer W., Bowes G. Photosynthesis and growth of water hyacinth under C02 enrichment // Plant Physiol. 1986. V.82. P.528−533.
- Sprent Y.J. Growth and nitrogen fixation in Lupinus arboreus as affected by shadding and water supply // New Phytol. 1973. V. 72. P. 1005−1012.
- Stitt M. Rising C02 levels and their potential significans for carbon flow in plant cells // Plant Cell Environ. 1991. V.14. P.741−762.
- Stitt M., Krapp A. The interaction between elevated carbon dioxide and nitrogen nutrition: the physiological and molecular background // Plant Cell Environ. 1999. V.22. P.583−621
- Streitzer R.J. Genetic dissection of rubisco structure and function. // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1993. V.44. P.411−434.
- Suzuki S., Nakamoto H., Ku M.S.B., Edwards G.E. Influence of Leaf Age on Photosynthesis, Enzyme Activity and Metabolic Levels in Wheat. // Plant Physiol. 1987. V. 84. P. 1244−1248.
- Teramura A.H., Sullivan J.H., Ziska L.H. Interaction of elevated ultra-violet-B radiation and CO2 on productivity and photosenthetic characteristics in wheat, rice and soybean // Plant Physiol. 1990. V.94. P.470−176.
- Tingey S.V., Walker E.L., Coruzzi G.M. Glutamine synthetase genes of pea encode distinct polypeptides, which are differentially expressed in leaves, roots and nodules. EMBO J. 1987. V.6. P. 1−9.
- Tissue D.T., Thomas R.B., Strain B.R. Long-term effect of elevated C02 and rubisco in loblolly pine seedlings // Plant Cell Environ. 1993. V. 16. P.859−865.
- Tolbert N.T. Photosynthesis and Photorespiration // Eds M.D.Hatch, C.B.Osmond and R.O.Stalyer. Wiley (Interscience). New York. 1971. 491p.
- Trinchant J.C., Rigaud J. Nitrate inhibition of nitrogenase from soybean bacteroids //Arch. Microbiol. 1980. V.124. P.49−54.
- Vah.ua T.A.T., Miller D.A. Effect of shadding on the N2-fixation yield and plant composition of field-grown soybeans // Agron. J. 1978. V.79. P.387−392.
- Veau de E.J., Robinson J.M., Warmbrodt R.D., van Berkenn P. et al. Photosynthesis and Photosynthate Partitioning in N2-fixing soybeans // Plant Physiol. 1990. V.94. P.259−267.
- Wallsgrove R.M., Lea P.J. Photosynthetic Nitrogen Metabolism // In: Photosynthetic Mechanisms and the Environment. Eds. Barber J., Baker N.R. Amsterdam: Elsevier Sci Publ. Biopmedical Division. 1985. P. 389 418.
- Watson R.T., Rodhe H., Oesheger H., Siegenthaler U. Greenhouse gases and aerosols // In: Climate: Scientific Assessment. J.T. Houghton, G.J. Jenkins, J.J. Ephranums (eds.). Cambridge University Press. Gambridge 1990. P. 1−40.
- Webber A.N., Nie G.Y., Long S.P. Effects of rising C02 concentration on expression of photosynthetic proteins // Photosynth. Res. 1994. V.39. P.413−425.
- Williams J.H.H., Farrar J.F. Endogenous control of photosynthesis in leafblades of barley // Plant Physiol. Biochem. 1988. V.26. P.503.
- Williams J.H.H., Winters A.L., Pollock C.J., Farrar J.F. Regulation of leaf metabolism by sucrose // Физиология растений. 1992. T.39. Вып. 4. С.687−691.
- Williams L.E., de Long T.M., Phillips D.A. Effect of changes in short carbon-exchanges rate on soybean root nodule activity // Plant Physiol. 1982. V.69. P.432−436.
- Wintermans J.F.G.M., De Mots A. Spectrophotometric Characteristics of Chlorophyll a and b and their Pheophytins in Ethanol // Biochem. Biophys. Acta. 1965. V.109. P.448−453.
- Wong S.C. Elevated atmospheric partial pressure of C02 and plant growth. I. Interactions of nitrogen nutrition and photosynthetic capacity in C3 and C4 plants. Oecologia. 1979. V.44. P.68−74.
- Wong S.C. Elevated atmospheric partial pressure of C02 and plant growth. 2. Non-structural carbohydrate content in cotton plants and its effect on growth parameters // Photosynth. Res. 1990. V.23. N 2. P. 171−180.
- Wulf R.D., Strain B.R. Effects of C02 enrichment on growth and photosynthesis in Desinodium peniculatum // Can. J. Bot. 1982. V.60. P. 10 841 091.
- Xu D.-Q., Gifford R.M., Chow W.S. Photosynthetic Acclimation in Pea and Soybean to High Atmospheric C02 Partial Pressure // Plant Physiol. 1994. V.106. P.661−671.
- Yelle S., Beeson R.C., Jr., Trudel M.J., Gosselin A. Acclimation of Two Tomato Species to High Atmospheric C02. // Plant Physiol. 1989. V.90. P. 1465−1477.