Дипломы, курсовые, рефераты, контрольные...
Срочная помощь в учёбе

Иммуногенные свойства и структура генома вируса оспы кур, репродуцированного в культуре клеток

Диссертация: Иммуногенные свойства и структура генома вируса оспы кур, репродуцированного в культуре клеток
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Показана высокая иммунизирующая активность культурального вируса оспы кур при аэрозольном и внутрикожном применении цыплятам в возрасте 60, 106 и 136 дней. Иммунитет формируется в течение 5−7 дней на срок не менее 12−14 месяцев. Установлена зависимость динамики образования и длительности противооспенного иммунитета главным образом от дозы вакцинного вируса при иммунизации цыплят в возрасте 60… Читать ещё >

Содержание

  • ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ «Оспа птиц»
  • 1. Общие сведения об оспе птиц
  • 2. Характеристика возбудителя
    • 2. 1. Строение вир иона
    • 2. 2. Физико-химические свойства
    • 2. 3. Характеристика нуклеиновой кислоты
    • 2. 4. Характеристика полипептидного состава вируса оспы кур
  • 3. Молекулярно-биологические методы изучения структуры генома
    • 3. 1. Физическое картирование геномов
    • 3. 2. Молекулярно-биологическая характёристика ДНК различных представителей семейства Рохушс1ае
  • 4. Некоторые аспекты формирования иммунитета при оспе птиц
  • 5. Профилактика оспы кур
  • СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • 6. Материалы и методы
  • РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • 1. Изучения влияния дозы вакцинного вируса на динамику формирования и длительность иммунитета против оспы у цыплят разного возраста, привитых аэрозольно
    • 1. 1. Выбор эффективной дозы культурального вируса оспы кур для аэрозольной иммунизации цыплят
    • 1. 2. Изучение динамики формирования иммунитета у цыплят 60-дневного возраста в первые дни после аэрозольной вакцинации
    • 1. 3. Динамика формирования иммунитета у цыплят, вакцинированных в возрасте 106 дней вирусом в дозе 1000 и 2000 ТЦД
    • 1. 4. Динамика формирования иммунитета у цыплят, вакцинированных аэрозольно в 136-дневном возрасте
    • 1. 5. Сравнительные данные о влиянии возраста и дозы вакцинного вируса на эффективность аэрозольной вакцинации цыплят
    • 1. 6. Сравнительное изучение длительности противооспенного иммунитета у кур, вакцинированных аэрозольно
  • 2. Изучение динамики формирования и длительности иммунитета у цыплят, вакцинированных внутрикожно
  • 3. Изучение эффективности иммунизации против оспы цыплят раннего возраста
    • 3. 1. Результаты внутрикожной вакцинации цыплят раннего возраста
    • 3. 2. Результаты интраназальной вакцинации цыплят культуральным вирусом оспы кур
    • 3. 3. Результаты оральной иммунизации цыплят суточного возраста
  • 4. Молекулярно-биологические исследования вакцинного штамма ВГНКИ-3 вируса оспы кур, репродуцированного в культуре клеток
    • 4. 1. Изучение полипептидного состава вакцинного штамма вируса оспы кур
    • 4. 2. Рестрикционный анализ ДНК вируса оспы кур шт. ВГНКИ-3 и построение физических карт генома
  • ОБСУЖДЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ '

Иммуногенные свойства и структура генома вируса оспы кур, репродуцированного в культуре клеток (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Оспа птиц известна более двухсот лет. Однако острота проблемы специфической профилактики этой болезни у домашних птиц сохраняется до настоящего времени. Это связано в основном с тем, что условия современного промышленного птицеводства, характерной чертой которого является концентрация птиц на малых площадях, предрасполагают к появлению и быстрому распространению в хозяйствах оспенной болезни, а ветеринарная наука, призванная совершенствовать средства и методы вакцинопрофилактики, отстала в решении этой задачи. Так, до 1990 I года биологическая промышленность страны выпускала для профилактики птичьей оспы две эмбриональные вакцины из вирусов оспы голубя (шт.Нью-Джерси) и оспы фазана (шт.27-АШ), которые по причине низкой иммуногенности создавали у цыплят иммунитет, длящийся не более 3−4 месяцев. Поэтому их должны были применять не менее 3−5 раз, да еще весьма трудоемким способом: втиранием цыплятам с помощью щеточки в фолликулы ощипанной голени. Для выполнения этой работы не хватало ветеринарного и вспомогательного персонала. Это способствовало поддержанию стойкого I неблагополучия по этой болезни в птицеводческих хозяйствах и целых регионах.

Существенные перемены в области специфической профилактики оспы у птиц в нашей стране произошли после внедрения в 1989 году сухой культуральной вакцины из вируса оспы кур и вскоре, в 1993 году, жидкой культуральной вакцины из голубиного вируса оспы, разработанных в ВГНКИ В. В. Гуненковым, З. Я. Чистовой, Г. Д. Кузнецовой и др. (1990, 1992, 1993).

Первая вакцина вводится птицам уколом в перепонку крыла однократно и обеспечивает создание иммунитета на срок не менее 12 месяцев. Вторая применяется аэрозольно и стимулирует образование иммунитета на срок до 7 месяцев.

Недостатком первой вакцины является небольшой запас инфекционной активности, чтобы быть примененной аэррзольно. А у второй недостаточная иммуногенность, поэтому она требует двукратного применения.

Цель и задачи исследований.

Целью настоящих исследований явилось изучение иммуногенных свойств и структуры генома вируса оспы кур, репродуцированного в культуре клеток, с перспективой создания более иммуногенной культуральной вакцины, пригодной для нескольких способов применения.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучение влияния дозы вакцинного вируса оспы кур шт. ВГНКИ-3, репродуцированного в культуре клеток, на формирование и длительность противооспенного иммунитета у цыплят, привитых аэрозольно.

2. Изучение динамики формирования и длительности иммунитета против оспы у цыплят, привитых культуральным вирусом оспы внутрикожно.

3. Изучение эффективности иммунизации против оспы цыплят раннего возраста.

4. Изучение структуры генома вируса оспы кур, шт. ВГНКИ-3, репродуцированного в культуре клеток, методом рестрикционного анализа.

Научная новизна работы.

Показана высокая иммунизирующая активность культурального вируса оспы кур при аэрозольном и внутрикожном применении цыплятам в возрасте 60, 106 и 136 дней. Иммунитет формируется в течение 5−7 дней на срок не менее 12−14 месяцев. Установлена зависимость динамики образования и длительности противооспенного иммунитета главным образом от дозы вакцинного вируса при иммунизации цыплят в возрасте 60 дней и старше. Экспериментально показано, что длительность противооспенного иммунитета у цыплят, привитых внутрикожно в возрасте 1−18 дней, ограничивается сроком, не превышающим 3−4 месяцев.

Методом рестрикционного анализа установлена структура генома вакцинного штамма ВГНКИ-3 вируса оспы кур, а также признаки сходства и отличия его от других штаммов вируса этого вида. Разработаны физические карты генома вируса.

Практическая значимость работы заключается в том, что обоснована целесообразность применения штамма ВГНКИ-3 вируса оспы кур, репродуцированного в культуре клеток, для иммунизации цыплят и кур против оспы с использованием нескольких способов иммунизации. Профили рестрикции и размеры PST 1, Sal Gl, Hind Ш и Bam HI фрагментов ДНК штамма ВГНКИ-3 могут служить его генетическими маркерами.

Апробация работы.

Основные положения диссертации доложены на: • 13 Международном симпозиуме Всемирной ассоциации ветеринарных микробиологов, иммунологов и специалистов по инфекционным болезням, 1994 (Перуджа — Мантова, Италия).

• Второй Международной научно-практической конференции I.

Актуальные проблемы ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции", 1997 (Москва).

• Конференции ВНИИВВиМ, посвященной 40-летию института, 1998 (г.Покров).

Диссертационная работа апробирована на межлабораторном совещании ВГНКИ (протокол N 4 от 29.03.99 г).

Публикации. По материалам исследований опубликованы 4 печатные работы (Россия, Италия).

На защиту выносятся следующие положения:

1. Штамм ВГНКИ-3 вируса оспы кур, репродуцированный в культуре клеток куриного эмбриона, обладает высокими иммунизирующими свойствами при аэрозольном, внутрикожном и интраназальном применении цыплятам разного возраста.

2. Сроки формирования противооспенного иммунитета не зависят существенно от возраста прививаемых цыплят, дозы и пути введения вакцинного вируса.

3. Доза вакцинного вируса оказывает существенное влияние на длительность противооспенного иммунитета у цыплят.

4. Цыплята, привитые внутрикожно в возрасте 1−18 дней, приобретают иммунитет на срок, не превышающий 3−4 месяцев.

5. Структура генома вакцинного культурального вируса по результатам рестрикционного анализа.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. ОСПА ПТИЦ I.

выводы.

1. Штамм ВГНКИ-3 вируса оспы кур, репродуцированный в культуре клеток куриного эмбриона, обладает высокой иммуногенной активностью при различных способах иммунизации цыплят. 1.

2. Формирование противооспенного иммунитета у 90−100% цыплят в возрасте от 1 до 136 дней, вакцинированных аэрозольно, внутрикожно и интраназально разными дозами культурального вакцинного вируса, завершается к 5−7 дню после прививки.

3. Динамика формирования противооспенного иммунитета у птиц в течение первых 4−6 дней после аэрозольной вакцинации существенно зависит от дозы примененного вируса. Это выражается в появлении большего числа иммунных цыплят по дням в указанный период в группе, получившей большую дозу.

4. Сроки сохранения противооспенного иммунитета зависят от возраста, в котором привиты цыплята, способа вакцинации и дозы применения вакцинного вируса.

5. Наиболее продолжительный иммунитет, равный 14 месяцам, формируется после аэрозольной вакцинации цыплят в возрасте 60 дней и старше. К указанному сроку иммунными остаются все птицы, получившие дозу 3000 ТДЦ50 и регистрируется несколько меньший процент иммунных, равный 88,2±4,5 и 72,9±6,4% у птиц, получивших дозы 2000 и 1000 ТЦД50 соответственно.

6. Внутрикожная вакцинация цыплят в возрасте 60 дней культуральным вирусом в дозе 1000 ИД50 приводит к образованию напряженного иммунитета на срок не менее 12 месяцев при незначительном снижении процента иммунных птиц в этот период от 100 до 83,3+10,8%.

— 1071.

7. Суточные и 18-дневные цыплята, привитые внутрикожно, приобретают сравнительно короткий иммунитет на срок, не превышающий 3 и 4 месяцев соответственно при получении ими вируса в дозе 600 ИД50, а при уменьшении дозы до 5 ИД50 иммунных к 3-месячному сроку остается не более 50%.

8. Нуклеиновая кислота культурального штамма ВГНКИ-3 вируса оспы кур отличается большим размером (370 кЬ) по сравнению с ДИК других штаммов того же вида вируса. Консервативная область генома сходна с таковой у других штаммов I вируса оспы кур. Уникальные последовательности нуклеотидов, характерные для штамма ВГНКИ-3, расположены в правой вариабельной области генома (0,7−0,95 единиц физической карты). I.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A., Александров H.H. и др. Компьютерный анализ генетических текстов.-М.: Наука.- 1990.
  2. В.В., Сюрин В. Н. Иммунобиологические свойства вакцинных штаммов вируса оспы голубей// Ветеринария, — 1968.- С.31−34.
  3. Ю.З. Молекулярная генетика вирусов человека и животных. -М.: Медицина.- 1975.- 302 с.
  4. В.В. Изучение наследственных признаков и генетической реактивации некоторых вирусов группы оспы. Автореф.дисс. на соиск.уч.степени канд.биол.наук. — Москва.- ВНИИ вет. вирусологии и микробиологии.- 1966.- 15 с.
  5. В.В., Сюрин В. Н. Сравнительное изучение генетических признаков оспы животных. Сообщение П. Спектр чувствительности, культур тканей и хорионаллантоиса куриных эмбрионов к различным вирусам оспы.//Вопросы вет.вирусологиии.- 1966.- Т.2.-С.380−392.
  6. В.В., Чистова З. Я., Кузнецова Г. Д. Сухая культуральная вакцина против оспы птиц// И.Л. N 216−90.- Яросл. М/т центр.н.-т. информации и пропаганды.-1990. 1
  7. В.В. Опыт создания новых вакцин против вирусных, респираторных, кишечных и оспенных болезней животных // Тезисы докладов Всесоюзной научной конференции «Совершенствование методов госконтроля вет. препаратов». -М.-1991, С.10−12.
  8. В.В., Чистова З. Я. и др. Вакцина против оспы птиц. Патент № 1 570 068 с 22.01.92.
  9. В.В., Чистова З. Я., Ходасевич Н. Ф. и др. вакцина пртив оспы птиц и способ ее изготовления. Патент № 1 405 148 с 12.05.93.
  10. Ю.Гуненков В. В., Кузнецова Г. Д., Яременко Л. И. и др. вакцина для аэрозольной и внутрикожной вакцинации птиц против оспы// Материалы 13 Международного симпозиума Всемирной ассоциации вет.микробиологов.-1994.-Италия.- с. 277.
  11. П.Гуревич Б. М., И. А. Дукалов и др. Экспериментальное изучение методов специфической профилактики и борьбы с оспо-дифтеритом кур// Советская ветеринария.- 1934.- 2.- С. 64.
  12. И.Н. Получение универсальной вирусвакцины против оспы кур, индеек и голубей // Труды XXXI пленума вет. секции академии, — М.- 1952.- С. 61−67.
  13. Ю.С. Аэрозольная вакцинация птиц одновременно против инфекционного ларинготрахеита, болезни Ньюкасла и оспы. -Автореф. дисс. на соиск. уч. степени канд.вет.наук.- Покров.- 1977.
  14. О.М. Развязання проблеми воспо-дифтериту у курей // Радянська ветеринария.- 1932.- N 3−4. С. 17−27.
  15. Г. Д., Тарасенко Е. В. и др. Адаптация вируса оспы кур к культуре клеток и его некоторые иммунобиологические свойства//Тез.докл.Всесоюзн.научн.конф.ВГНКИ.-1991.-с.64−66.
  16. Г. Ф. Биометрия. М.:Высшая школа.-1990.-352 с.
  17. Н.В., Ушаков A.A., Барановский В. О. Испытание американской вакцины против оспы дифтерита птиц// В кн.: Контр.инст.вет.преп.- М.- 1947. — С.20−29.J
  18. С. Молекулна биология на шарковирусите // Ветеринарно Мед. Науки.- 1982,-Т. 19.-№ 10.-С. 107−113.
  19. Певзнер П. А, Миронов A.A. Эффективный метод физического картирования // Молекулярная биология.- 1987.- т.21.-№ 3.-С.788−796.
  20. Е.А. Об иммунитете у птиц, вакцинированных оспенным вирусом голубя // Труды ВНИИПП.- 1937.- № 3.- СЛ.
  21. Садовский Т. Я, Данилова Е. В. До бюлогии eipycy восподифтериту птицы // Радянська ветеринар1я.- 1932.- № 9.- С.12−14.
  22. В.И. Экспериментальное изучение аэрозольной вакцинопрофилактики оспы птиц // Тез. 3-й Всес. конференции по аэрозолям.- Ереван.- 1977.- Т.З.- С.94−96.
  23. Г. Е. Полиморфизм длин рестрикционных фрагментов ДНК у сельскохозяйственных животных: методы изучения и перспективы использования // Успехи современной генетики.-Вып. 18.-М.: Наука.-1993.- 232 с.
  24. В.Н. Иммунизация против оспы-дифтерита птиц // Ветеринария, — 1949.- № 11.- С.35−39.
  25. В.Н., Самуйленко, А .Я., Соловьев Б. В., Фомина Н.В.// Вирусные болезни животных .- М.: ВНИТИБП.- 1998.- 928 с.
  26. Ф., Б.Мак-Ослен и др. Размножение ДНК-содержащих вирусов // В кн.: Биология вирусов животных. Перевод с английского В. И. Агола. -М.-1977.- Т.1.- С.274−289.
  27. ., Д.Найп и др. Репликация поксвирусов // В кн.: вирусология. Перевод с англ.А. В. Гудкова.- М.- 1989.- Т.З.- С.246−275.
  28. Т.В., Чистова З. Я. Усовершенствование метода контроля вакцин против оспы птиц на иммуногенность // Тезисы докладов Всесоюзной научной конференции «Совершенствование методов госконтроля вет.препаратов.- М.-1991, — С.63−64.
  29. Ф.Б., Фарзалиев И. А., Ибрагимова А. И. Специфическая профилактика оспы птиц.// Аз. НИИНТЛ. Тез.докл.научн.конф., поев. 75-летию со дня основания АзНИВИ.- Баку.- 1977.- С.26−27.
  30. Ф.Б. Оспа птиц и меры борьбы с ней. Автореф.дисс. на соискание уч. степени докт.вет.наук.-М.- ВИЭВ.- 1978.- 36 с.
  31. Ф.Б., Ибрагимова А. И., Керимова С. Н. Влияние иммунного фона на выработку иммунитета против оспы после ревакцинации кур вакциной из штамма 27-АШ // Сб.научн.трудов Азерб.н.-и. вет. ин-та.-1983.- Т.29.- С.48−52.
  32. И.В. Выделение и изучение клонов вакцинных штаммов вируса оспы птиц. Автореф.дисс.на соиск.уч.степениканд.биол.наук. Тарту.- Эстонский НИИ животноводства и ветеринарии.- 1971. — 19 с.
  33. Н.К. Конструирование и анализ клонотек геномов. // Биотехнология. Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР.-М,-1989.- Т.16.- С. 252.
  34. A1-Ani Muntasir О.А. An outbreak pf pox among pheasants in Iraq // Avian Patol. 1986.- 15.-N 4.-P.795−796.
  35. Alboiu M., Bern S. et al. Influenta unor factory de mediu asupa vaccinurilor antivariolice aviare liofilizate // I. Sava Luorari (Inst.de cecretari veterinare si biopreparate «Pasteur». — 1967.- V 4.- N 3−4.- P. 111−121.
  36. Andrews C., Pereira H.G., Wildy P. Viruses of vertebrates, 4 th ed.1978.- Bailiere, London.
  37. Arai S., Arai C., Fujimaki M. Cutaneous tumor-like lesions due to poxvirus infection in Chilean flamingQS // J.Comp.Pathol.- 104.- P.439 -441.
  38. Arhelger R., Randall C.C. Electron microscopic observation on the developnent of fowlpox virus in CAM // Virology.- 1964.- N 22.- P.59−66.
  39. Arita M., I.Tagaya. Virion polypeptides of poxviruses// Arch. of Virol.1979.-N 63.-P.209−225.
  40. Banks T.A., Rouse B.T. Herpesviruses immune escape artists?// Clin.Infect.Dis.- 1991.-14, — P.933−941.
  41. Baxendale W. Studies of 3 Avianpox. viruses and the development of an impruved fowlpox vaccine // Vet.Rec.-1971.- p.5−10.
  42. Baxby D. Identification and interrelationship of the variola/vaccinia subgroup of poxviruses // In: Progress in med.virol.- 1975.- V.19.-P.215−246.
  43. Beard C.W., Schnitzlein W.M., Tripathy D.N. Effect of route of administration of the efficacy of a recombinant fowlpox virus against H5 N2 avian influenza//Av.Dis.- 1992.-36.- P. 1052−1055.
  44. Beaudette F.R. Twenty years of progress in immunization against virus diseases of birds.//J.Am. Vet.Med. Assoc. -1949.- V.155.- P.232−244.
  45. Bellet A.J.D., F.Fenner. Studies of base-sequence homology among some cytoplasmic deoxyriboviruses of vertebrate and invertebrate animals // J. Of Virol.-1968 .-V.2.-P. 13 74−13 80.
  46. Boone R.F., Eusinger M.J. et al. Synthesis of mRNA guanyltransferase and mRNA methyltransferases in cells infected with vaccinia virus // J.Virol.- 1977, — N 21.- P.475−483.
  47. Boone R.F., Moss B. Sequence complexity and relative abundance of vaccinia virus mRNAs synthesized in vivo and in vitro // J.Virol.- 1978.-N 26.- P.554−569.
  48. Boyle D.B., Heine H.G. Influence of dose and route of inoculation on responses of chickens to recombinant fowlpox virus vaccines // Vet.microbiol.- 1994.-V. 41.-P. 173−181.
  49. Boyle D.B., A.D.Pye, B.E.H Coupar.1 Comparison of field and vaccine strains of Australian fowlpox viruses.// Arch.Virol.- 1997.- V.142. P.737−748.
  50. Boyle D.B., Coupar B.H. Identification and cloning of the fowlpox virus TK gene using vaccinia virus // J.Gen.Virology.- 1986.- V.68.-P.1591−1600.
  51. Brakel S., Kates J. Poly (A) polymerase from vaccinia virusinfected cells. Partial purification and characterization // J.Virol.- 1974.-N 14.-P.715−723.
  52. Campbell J.I.A., Binns M. M et al. Tandem repeated sequences within the terminal region of the fowlpox virus genome // J.Gen.Virol.-1989.-V.70, P.145−154.
  53. Coupar B.E.H., T. Teo et al. Restriction endonuclease mapping of the fowlpox virus genome//Virology.- 1990.-V.179.-P. 159−167.
  54. Cunningham C.N. Avian pox // In.: diseases of Poultry.- 1978.-7th ed., Ir., ed. Iowa State Univ. Press, Ames. IA.
  55. Dales S., Kajioka R. The cycle of multiplication of vaccinia virus in Earles strain L cells. I. Uptake and penetration // Virology.- 1964.- N 24.-P.278−294.
  56. Dales S., Pogo B.G.T. Biology of Poxviruses //Virology Monographs.-1981.- V. 18 ed. by D.W.Kingsbury and H. Zur Hausen, Springer-Verlag, New York.
  57. Dharsana R., Spradbrow P.B. The demonstration of cellmedialed immunity in chickens vaccinated with, fowlpox virus // 3 bl. Veter.-Med. Reiche B.-1985.- V. 32.- N 8.- P.628−632.
  58. Dorn P., Kronthaler O. Experimentelle Untersuchungen uber prazipitierende anticorper bei geflugelpocken // Dtsch. Tieraerztl Mochenschr.- 1965, — V. 72.- P. 169−172.
  59. Drillien R., D. Spehner et al. Similar genetic organization between a region of fowlpox virus DNA and the vaccinia virus Hind 111 J fragment despite divergent location of the TK gene // Virol.-1987.-V.160.-P.203−209.
  60. Edbauer C., Weinberg R., Taylor J. Protection of chickens with airecombinant fowlpox virus expressing the Newcastle disease virus haemagglutinin-neuraminidase gene 11 Virol. -1990.- V.179.-P.901−904.
  61. Esteban M., Metz D.N. Early virus protein synthesis in vaccinia virus-infected cells // J.Gen.Virol.- 1973, — N 19, — P.201−216.
  62. Fallavena L. C, Rodrigues N.C., Scheutler W. Atipical fowlpox in broiler chickens in southern Brasil // Vet.Rec.- 1993.- V. 132.-P.635.
  63. Fatunmbi O.O., W.M.Reed. Evaluation of a commercial modified live virus fowl pox vaccine for the control of variant fowl pox virus infections // Avian Dis.-1996.
  64. Fatunmbi O.O., W.M.Reed. The control of variant fowl pox virus infection using a commercial modified live virus fowl pox vaccine // Proc. 45th North Central Avian Disease Conferens, Iowa.- 1994.- P. 83.
  65. Fatunmbi O.O., W.M.Reed. Use of a bivalent vaccine in the control ofthavian pox in chickens// In: Proceeding of the 45 North Central Avian Dis.Conference.-1993.- P.94−95.
  66. Fenner F. The classification and nomenclature of viruses. Summary of results of meeting of the International Commitee on taxonomy of viruses in Madrid//J. ofGen.Vir.- 1976.-V.31.-P.463−470.
  67. Fenner F. Portraits of viruses: the poxvirus // Intervirology.-1979.-V.ll.- P.137−157.
  68. Gafford L.G., Randall C.C. The high molecular weight of the fowlpox genome //J.Mol.Biol. -1967.-V.26.- P.303−310.
  69. Gafford L.G., Randall C.C. Virus-cpesific DNA and DNA in nuclei of cells infected with fowlpox virus // Vrology.-1976.- N 69.-P. 1−14.
  70. Gassman U., R. Wyler et al. Analysis of parapoxvirus genomes// Arch.Virol.- 1985.-V. 83, — P. 17−31.
  71. Gelenczei E.F., Lasher H.N. Comparative studies of cell-culture propagated avian pox viruses in chickens and turkeis // Av.Dis.- 1968.-V.12.-P.142−150.
  72. Geshelin P., Berns K.I. Characterization and localization the naturallyroccuring cross-links in vaccinia virus DNA // J. Mol.Biol.-1974.-V.88.-P.785−796.
  73. Ghildyal N, W.M.Schnitzlein et al. Genetic and antigenic differenses between fowlpox and quailpox viruses // Arch.Vir.- 1989.-V.106.-P.85−92.
  74. Gooding L.R. Virus proteins that counteract host immune defences // Cell.- 1992.-V.71.-P. 5−7.
  75. Graham R., Barger E.N. Fowlpox // Univ. 111.Coll.Agr.Ext.Serv.Agr.Home Econ.Circular.-1935.- N 430.- p.1−15.
  76. Graham R., Brandly C.A. Immunisation against pox in domestic fowl // Univ. Illinois Agr.Exp.Stat.Bull. -1940, — V. 470.- P. 1−76.
  77. Hanafusa H., T. Hanafusa et al. Transformation phenomena in the pox group virus //Bikens J.-1959.-V.2.- P.85−91.
  78. Helm-Bychowsky K.M., Wilson A.S. Rates of nuclear DNA evolution in phesant-like birds: evidens from restriction maps // Proc.Nat.l Acad.Sci.USA.- 1986.-Vol.83.- N 3.- p.688−692.
  79. Hiller G., Juhgwirth C. et al. Fluorescence microscopical analysis of the life cycle of vaccinia virus in chick embryo fibroblasts // Exp. Cell Res.-1982.-N 132.-P. 81−87.
  80. Hirsh R.L. The complement system: its importance in host response to viral infection // Microbiol.Rev.- 1981.- V. 46.- P.71−85.
  81. Holowczak J.A., Joklik W.K.// Virol.- 1967.-33.-P.717−725.
  82. Hoyle P. Use of commercial software on IBM personal computers// IRN Press.- 1987.-p.417.
  83. Hyde J. M, Gafford L.G. et al. Fine structure of the coat and nucleoid material of fowlpox virus // J.Bacteriol.-1965.-V.89.- N 6, — P.1557−1569.
  84. Hyde J. M, Gafford L.G. et al//Virology.- 1967, — N 33, — P. 112−120.94.1chihashi G, Matsumoto S. et al. Biogenesis of poxviruses // Virology.1971.-N 46.-P.507−532.
  85. Joklik W. K, Becker J. The replication and coating of vaccinia DNA // J.Mol.Biol.-1964.- N 10.- P.452−474.
  86. Johnson W.T. Fowl pox prevention by immunisation // JAVMA.-1927.-V.71.-P. 750−763.
  87. Johnson W.T. The effect of fowl and pigeon pox virus vaccination of egg production // JAVMA.-1931.- V.78.-P.98−101.
  88. Jordan F.T.W, Chabb R.C. The agar gel diffusion technique in the diagnosis of infectious laryngotracheitis and its differentiation from fowlpox // Res.Vet.Sci.-1962.- V. 3.- P.245−255.
  89. Lake J. R, P.D.Cooper. Deletion of the terminal sequences in the genomes of the white pock and host-restricted mutants of rabbitpox virus//J.Gen. Virol.- 1980.-V.48.-P. 135−137.
  90. Letellier C, Burny A. et al. Construction of a pigeonpox virus recombinant expression of the Newcastle disease virus fusion glycoprotein and protection of chickens against NDV challenge // Arch.Virol.- 199, — V. l 18,-P.43−56.
  91. Mackett M, Archard L.S. Conservation and variation in orthopoxvirus genome structure // J.Gen.Virol.-1979.-45.-p.683−701.
  92. Mahnel H. Labordifferenzierung der Orthopockenviren // Zentralblatt fur Vet, Reine B.-1974.- N 21.- p.242−258.
  93. Mattews R.E.F. Classification ahd nomenclature of viruses // Intervirology.- 1982.- 17.-p.42−46.
  94. Mayr A, H. Mahnel et al. Systematisierung und Differenzierung der Pockenviren// Zentralblatt fur Vet, Reine B.-1972.- N 19.- p.69−88.
  95. Metz A.L. et al Venerial pox in breeder turkeys in Minnesota //Av.Dis.- 1985, — 29(3).-p.850−853. ,
  96. Mockett A.P.A., Southee et al. Fowlpox virus: its structural proteins //Av.Pathol.- 1987, — 16.-p.493−504.
  97. Morita C. Studies on fowlpox virus. 11 Plaque neutralization test // Avian Dis.-1973.- V.17.- P.93−98.
  98. Muller H.K., R. Wittek et al. Genetic relationship between two poxviruses determined by restriction analysis of their DNAs//Experienta.- 1977.-N 33.-p.133.
  99. Nagy E. et al. Vaccination of 1-day old chicks with Fowlpox virus by the aerosol, drinking water or cutaneous routes // Av.Dis.-1990.-34.-p.677−682.
  100. Okada H., Tanaka H et al. Increased immunogenisity of tumor cells by indication of complement activation capasity of cell membrane// Basic Mecanisms and Clinical Treatment of Tumor Metastasis Academic Press.- 1985.- p.255−270.
  101. Okada H. Effect of complement depletion by cobra venom factor on fowlpox virus infection in chickens and chicken embryos // J.Virol.-1986.-V.57.-P. 670−673.
  102. Paoletti E., Grady L.J. Transcriptional complexity of vaccinia virus in vivo and in vitro// J.Virol.-1977.-N 23.- P.603−615.
  103. Paoletti E., Cooper N., Moss B. Regulation of syntesis of two immunologically distinct nuclei acid-dependent nucleoside triophosphate phosphohydrolases in vaccinia virus-infected Hela cells // J.Virol.- 197.- N 14.- P.578−586.
  104. Pathak P.N., Rama Rao G.V.S.V. et al. In vitro cellular immunity to unrebated pathogens in chicens infected with fowpox virus // Infect.Immun.-1974.- V.10.- P. 34−41.
  105. Peleg A., I. Samina, J.Brenner. Vaccination of chickens with live fowl pox vaccine in oil// J.Vet.Med.-1993.- B.40.-p. 522−524.
  106. Pennington T.N. Vaccinia virus polypeptide syntesis sequential appearens and stability of pre-and postreplicative polypeptides // J.Gen.Virol.- 1974.- N 25.- P.433−444.
  107. Perelman B.A.et al. Pox in ostriches // Av.Pathol.- 1988.- V.17.-P.735−739.
  108. Pilchard E.I., Hanson L.R. et al. Fowl-pox neutralization antibody and viraemia in turkeys// Av.Dis.- 1962.- N 6.- p. 396−402.
  109. Randall C.C., Gafford L.G. et al. Molecular weight determinationifowlpox virus DNA by electron microscopy // J.Bacteriol.- 1964.- V. 87, — P.939−944.
  110. Randall C.C., Gafford L.L. et al. Electron microscopy study of fowlpox virus. // J.Bacteriol.-1966.- V. 91.- P. 95−100.
  111. Reed W.M., Fatunmby O.O. Characterisation and immunogenisity of variant strains of avian poxviruses // Proc. 131 th AVMA Annual meeting, San Francisco.- 1994.-P.83.
  112. Sarma D.K., Sharma S.N. Immune responce of chicks vaccinated withfowl pox virus vaccines by the feather follicle method //i
  113. Trop.Anim.Prod.- 1989.- V.21.- P. 107−108. 131. Sarov I., Becker Y. Studies of vaccinia virus DNA// Virol.- 1967.- N 35, P.369−375.
  114. Sissons J.G.R., Oldstone M.B.A. et al. Antibody-independent activation of the alternative complement pathway by measles virus-infected cells // Proc.Natl.Acad.Sci.USA.- 1980.- N77.- P.559−562.
  115. Smith G.L. Vaccinia virus glicoproteins and immune evasion // J.Gen.Virol.- 1993.-N47,-P. 1725−1740.
  116. Spear P. G, Roisman B.J.// J.Virol.- 1972.- N, 9.-P.143−159.
  117. Spriggs M.K. One step ahead of the game: viral immunomodulatory molecules // Annu.Rev.Immunol.- 1996.- N 14, — P. 101−130.
  118. Tajima M. Ushijima J. Electron microscopy of avian pox viruses withspesial reference to the significance of inclusion bodies in viralreplication//Jpn.J.Vet.Sci.- 1966,-N28.- P.102−118.i
  119. Taylor J., Edbauer C., Rey-Senelonge. Newcastle disease virus fusion protein expressed in a fowlpox virus recombinant confers protection in chickens // J.Virol.- 1990.- N 64.- P. 1441−1450.
  120. Templeton A.R. Phylogenetic inference from restriction endonuclease cleavage site maps with particular reference to the evolution of humans and the aper//Evolut.- 1983.-Vol.37.-p.221−244.
  121. Tripathy D.N. Hanson L.E. et al. Detection of fowl pox virus antigen in tissue culture by fluorescent antibody technique // Avian Dis.- 1970.-N 14.- P.810−812.t
  122. Tripathy D. N, Hanson L.E. Immunity to fowlpox // Am.J.Vet.Res.-1975.-N36, — P.541−554.
  123. Tripathy D.N., Cunningham C.N. Avian pox // In: Diseases of poutry. Iowa State University Press. Amer. Iowa.- 1984.- P. 524−534.
  124. Tripathy D.N.// A laboratory manual for the isolation and identification of avian patogens.- 1989.- P. 103.
  125. Tripathy D.N. Pox // Diseases of poultry, 9 th ed. B.W.Calnek, H.J.Barnes. Iowa State University Press.- 1991.- P.583−596.
  126. Tripathy D. N, Hanson L.E. et al. Atipical fowlpox in a poultry farm in Illinois // AvianDis.- 1974.- N18.- P.84−90.
  127. Tripathy D.N. Outbreaks of fowl pox in vaccinated flocks // In: Proceeding of the 44th North Central Avian Disease Conf. -1993, — P. 93.
  128. Tsubahara H, Sazava H. et al. Complement fixation inhibition with fowl serum // Bull. Hatl Inst.Anim.Health.- 1956.- N 31.- P. 59−70.
  129. Tsubahara H, Kataoka T. et al. Complement fixation in fowlpox. // Bull.Natl.Inst.Anim.Health.- I960.- N 41.- P.6−10.
  130. Vencatasubba Rao C, M.S. Jayaraman et al. Laboratory and field trials with cell culture fowl pox vaccine // Indian Vet.J.- 1978.- V.55- N 2.- P.133−136.
  131. Webster R. G, Kawaoka Y, Taylor J. Efficasy of nucleoprotein and haemagglutinin antigens expressed in fowlpox virus as vaccine for influenza in chickens // Vaccine.- 1991.- N 9.- P. 303−308.
  132. Williamson J. D, Cooke B.S. Argindsuccihate synthe taselyase activity in vaccinia virus-infected Hela and mouse cells // J.Gen.Virol.- 1973.- N 21.- P.349−357.
  133. Winterfield R. W, Hitchner S.B. The response of chickens to vaccination with different concentration of pigeon pox and fowl pox viruses // Av.Dis.- 1965.- N9.- P.237−241.
  134. Winterfield R. W, Reed W. Avian pox: infection and immunity with quail, Psittacine, Fowl and pigeon pox viruses.// Poultry Sci.- 1985.- N 64.- P. 65−70.
  135. Wittek R, Menna A. et al. Hind'111 and PST 1 restriction sites mapped on rabbit poxvirus and vaccinia virus DNA // J.Virol.-1977.-N 23.- P.669−678.
  136. Wittmann G. Der nachweis pratipitierender anticorper ber der hunerpokeninfection mit hilfe des agar-diffusionverffhrens // Zentralbl Veterinaermed B.- 1958.-N 5.- S.769−775.
Заполнить форму текущей работой

Заказал и сдал!